Коррекция биоценоза влагалища глубокостельных коров для предупреждения развития послеродовых эндометритов
Март 2015
В условиях интенсивного животноводства проблема профилактики послеродовых эндометритов у высокопродуктивных коров, наносящих существенный экономический ущерб в результате нарушения воспроизводительной функции, снижения молочной продуктивности, преждевременной выбраковки приобретает особую актуальность. Большую роль в этиологии и развитии послеродовых эндометритов наряду со специфическими инфекциями (вирусная диарея — болезнь слизистых, инфекционный ринотрахеит, парвовирусная инфекция, бруцеллез, лептоспироз, хламидиоз и др.), проявляющихся нарушением воспроизводительной функции у коров, играют условно-патогенная микрофлора и дисбактериозы в родовых путях.
Для профилактики послеродового эндометрита предложены раз-личные средства, в том числе препараты, обладающие антиоксидантным и иммуномодулирующим действием, нормализующие гормональный и метаболический гомеостаз и инволюционные процессы в половых органах коров после родов.
Наиболее широко для предупреждения развития указанной патологии используются антимикробные препараты и особенно антибиотики, направленные на подавление жизнедеятельности бактерий, вызывающих эндометриты. Однако частое их применение сопровождается микроэкологическими нарушениями в различных биотопах животных, в том числе в родовых путях, а также формированием резистентности у микроорганизмов.
Перспективным направлением в качестве альтернативы использования антибиотиков в комплексе мероприятий по профилактике эндометритов является применение пробиотиков для коррекции микробного пейзажа родовых путей коров в связи с часто регистрируемыми у них дисбиотическими нарушениями во влагалищном микробиотопе перед отелом.
В статье представлены данные по изучению микробного пейзажа в родовых путях коров до и в первые сутки после отела, показаны корригирующее влияние на него пробиотиков «Гипролам» и «Симбитер», которые применяли за 5–7 дней до родов и их эффективность при профилактике послеродовых эндометритов. Последняя обусловлена свойствами молочнокислых бактерий, входящих в состав пробиотиков, приживляться в родовых путях коров-матерей и поддерживать на оптимальном уровне содержание индигенной микрофлоры, обеспечивающей колонизационную резистентность генитального тракта, что предотвращает заселение его патогенными микроорганизмами и чрезмерное размножение условно-патогенных бактерий, находящихся в родовых путях.
Ключевые слова: коровы, микрофлора родовых путей, пробиотики, послеродовый эндометрит.
Высокая заболеваемость коров острым послеродовым эндометритом наносит большой экономический ущерб в результате нарушения воспроизводительной функции, снижения молочной продуктивности, преждевременной выбраковки животных и др. (1–8).
Наряду с возбудителями инфекционных заболеваний (вирусная диарея- болезнь слизистых, инфекционный ринотрахеит, парвовирусная инфекция, бруцеллез, лептоспироз, хламидиоз, микоплазмоз и др.), нарушающими воспроизводительную функцию у коров, большую роль в этиологии и развитии у них послеродовых эндометритов играет условно патогенная микрофлора и дисбактериозы, проявляющиеся стойкими количественными и качественными изменениями бактерий, входящих в состав нормальной микрофлоры (9–21).
Для предупреждения развития послеродовых эндометритов у коров ре-комендованы «Карофетин» (22) и препараты селена (23–26), обладающие антиоксидантным и иммуномодулирующим действием, адаптогены — стимулятор эмбриональный и крапива двудомная (27), препараты плаценты, нормализующие гормонально-метаболический гомеостаз и инволюционные процессы в половых органах коров после родов (28–30), «Утеротон», усиливающий сократительную деятельность матки (31–34), а также антимикробные препараты (35–41).
Одним из основных способов профилактики послеродовых патологий является использование средств, направленных на подавление жизнедеятельности микрофлоры и устранение воспаления (42–45). Применение антибактериальных препаратов после родов с профилактической целью в течение 3 дней не оказывает существенного влияния на микробиоценоз влагалища. Однако, короткими курсами антибиотикотерапии не всегда достигается желаемый результат, а после длительного их применения наблюдается снижение количественных и качественных характеристик нормальной микрофлоры, и прежде всего уменьшение концентрации и активности лактобактерий, являющихся базовым облигатным компонентом, увеличение рН вагинального секрета, что препятствует своевременному восстановлению микробиоценоза влагалища в послеродовом периоде, и создаются условия для размножения условно патогенной микрофлоры (46,47). Кроме того это усугубляет ситуа-цию, складывающуюся в генитальном тракте в послеродовой период, когда в норме происходят существенные изменения количественного и качественного состава микрофлоры. Отмечается значительное снижение количества лактобацилл и бифидобактерий, одновременно увеличивается содержание потенциально патогенной микрофлоры, что способствует развитию послеродовых гнойно-септических заболеваний. Это связано с вымыванием микроорганизмов из влагалища околоплодными водами и кровью, травматизацией родового канала, контаминацией влагалища кишечной микрофлорой (48,49).
Восстановление защитной микрофлоры при дисбиотических нарушениях самостоятельно, без применения биотерапевтических препаратов затруднено, что подтверждается рецидивами заболеваний (50–55).
В настоящее время альтернативой использованию антимикробных препаратов при профилактике послеродовых осложнений является применение пробиотиков, как наиболее экологически естественных конкурентов патогенной и условно патогенной микрофлоры (56–60).
Однако использование их в первые сутки после отела не всегда предотвращает возникновение и развитие катарального эндометрита, что обусловлено дисбиотическими нарушениями в влагалищном микробиотопе у стельных животных перед отелом.
В связи с этим перспективно использование пробиотических препара-тов для коррекции микробного пейзажа родовых путей коров до отела.
Цель исследования — изучить корригирующее влияние пробиотиков «Гипролам» и «Симбитер-2» на микробный пейзаж влагалища глубокостельных коров для предупреждения развития у них послеродовых эндометритов.
Методика. Для опыта было подобрано 36 животных красно-пёстрой породы с молочной продуктивностью в предыдущую лактацию 5100–5400 кг. Способ содержания коров в сухостойный период — групповой беспривязный на глубокой соломенной подстилке. Группы формировали с учетом срока ожидаемого отела. За 10–15 дней до родов животных перевели в предродовую секцию, а при появлении их предвестников — в секцию, где проходил отел.
Коров разделили на 3 группы: 1-я и 2-я (опытные), 3-я (контрольная). Животным первой опытной группы (n=12) ежедневно с интервалом 24 часа до отела интравагинально с помощью шприца Жанэ и гинекологической пипетки (от 5 до 7 введений) применяли пробиотический препарат «Гипролам» по 100 см³. Коров второй опытной группы (n=12) интравагинально по аналогичной схеме обрабатывали мультипробиотиком «Симбитер-2». Животным контрольной группы (n=12) препараты не применяли.
Препарат «Гипролам» представляет собой суспензию, которая содержит жизнеспособные штаммы молочнокислых бактерий Lactobacillus fermentum 44/1 (ВКПМ В-2940) и Lactococcus lactis subsp. Lactis 574 (ВКПМ В-3145) в количестве не менее 1×108 КОЕ/см³, а также вспомогательные вещества — вода, сыворотка молочная, глюкоза, экстракт дрожжевой. Входящие в состав препарата штаммы молочнокислых бактерий способны приживляться в родовых путях у коров на срок до 3-х недель и оказывать антагонистическое воздействие на проникающую в матку условно патогенную микрофлору (61).
Мультипробиотик «Симбитер-2» — это многокомпонентный био-терапевтический препарат, созданный для нормализации вагинальной микрофлоры женского организма. Основу препарата составляют бактерии видов: Lactobacillus acidophilus, L.casei, L.plantarum, L.gasseri, L.brevis, Bifidobacterium bifidum, B.longum, B.breve, B.infantis, B.adolescentis, Propionibacterium freudenreichii ssp. shermanii, P.acidipropionici, являющиеся ключевыми «протективными» микроорганизмами урогенитального тракта. Они активно ферментируют гликоген с образованием органических кислот, синтезируют перекись водорода, бактериоцины и лизоцим, обладают высокой адгезивной способностью в отношении эпителиоцитов, продуцируют витамины и полисахариды (62).
За коровами в течение 14 дней после отела проводили клинические наблюдения и регистрировали послеродовые патологии.
Состояние микробиоценоза родовых путей коров до и после отела оценивали по количественному содержанию и частоте выделения индигенной и условно патогенной микрофлоры. Бактериологические исследования, изучение культурально-морфологических и биохимических свойств выделенных микроорганизмов проводили общепринятыми методами (63).
Профилактическую эффективность применения пробиотиков определяли по формуле Е=100x(в-а)/в, где Е- показатель эффективности в %, а — заболеваемость среди обработанных препаратом, в — тоже среди необработанных (64). Для статистической обработки использовали программу Statistica'99 Edition.
Результаты. Микробный пейзаж родовых путей коров опытных и контрольной групп за 5–7 дней до отела не имел существенных различий. Количество лактобацилл составляло 6,55–7,64 lg КОЕ/см³; бифидумбактерий 6,50 — 7,78; Corynebacterium spp. 2,25 — 2,49; Staphylococcus saprophyticus 4,61 — 5,86; Staphylococcus epidermidis 3,64 -5,37 lg КОЕ/см³ при 100% частоте их выделения. Кроме того от них в 16,7–25,0% случаев изолировали Escherichia coli 2,51 — 4,52 lg КОЕ/см³ и в 25,0–75,0% — стрептококки гр. С 4,50 — 5,70 lg КОЕ/см³.
Таблица 1 — Микробный пейзаж родовых путей коров (количество микроорганизмов lg КОЕ/см³) до отела — числитель, после отела — знаменатель.
| Наименование микроорганизмов |
Коровы | ||
|---|---|---|---|
| обработанные | контроль | ||
| «Гипролам» | «Симбитер-2» | интактные | |
| Lactobacillus spp. | 7,53 ± 0,59* 7,64 ± 0,61* |
7,64 ± 0,83* 7,58 ± 0,1* |
6,55 ± 0,71* 5,64 ± 0,94* |
| Bifidobacterium spp. | 7,64 ± 0,72* 7,75 ± 0,86* |
7,78 ± 0,69* 7,54 ± 0,73* |
6,50 ± 0,46* 5,47 ± 0,68* |
| Corynebacterium spp. | 2,25 ± 0,02* 2,20 ± 0,01* |
2,49 ± 0,17* 2,66 ± 0,23* |
2,32 ± 0,19* 3,51 ± 0,41* |
| Staphylococcus saprophyticus | 5,52 ± 0,49* 5,76 ± 0,17* |
4,61 ± 0,16* 4,55 ± 0,21* |
5,86 ± 0,12* 5,61 ± 0,81* |
| Staphylococcusepidermidis | 3,64 ± 0,02* 4,54 ± 0,74* |
4,62 ± 0,61* 5,59 ± 0,32* |
5,37 ± 0,25* 4,32 ± 0,17* |
| Staphylococcusaureus | н/в н/в |
н/в н/в |
н/в 4,32 ± 0,03(25,0) |
| Streptococcus гр.С | 4,50 ± 0,16(50,0) 4,43 ± 0,58(50,0) |
4,57 ± 0,69(25,0) 4,51 ± 0,65(33,3) |
5,70 ± 0,45(75,0) 6,64 ± 0,81(75,0) |
| Enterococcusfaecalis | н/в 2,63 ± 0,01(25,0) |
3,95 ± 0,01(16,7) 3,49 ± 0,01(25,0) |
3,67 ± 0,22(25,0) 4,35 ± 0,85(75,0) |
| Streptococcus spp.гем. | н/в 3,91 ± 0,01(25,0) |
2,56 ± 0,86(8,3) 3,64 ± 0,73(8,3) |
5,68 ± 0,38(25,0) 5,39 ± 0,52(75,0) |
| Enterobacter spp. | н/в н/в |
2,77 ± 0,85(8,3) н/в |
н/в 4,49 ± 0,02(25,0) |
| Escherichiacoli | 2,51 ± 0,89(25,0) н/в |
3,46 ± 0,25(16,7) н/в |
4,52 ± 0,74(25,0) 5,70 ± 0,65(50,0) |
* микроорганизмы выделяли у 100% животных; в скобках частота их выделения в %; н/в — не выделяли.
От животных, которым впоследствии применяли «Симбитер-2», и от интактных коров в 8,3–25,0% случаев выделяли гемолитические стрептококки и в 16,7–25,0% — Enterococcus faecalis (2,56–5,68 lg КОЕ/см³ и 3,67–3,95 lg КОЕ/см³ соответственно). Кроме того у коров до применения «Симбитера-2» в 8,3% случаев обнаруживали бактерии рода Enterobacter spp. (2,77 lg КОЕ/см³) (табл. 1) .
Клиническими исследованиями установлено, что у обработанных «Гипроламом» коров отел протекал без родовспоможения. Период выведения плода составил 60±10 минут. Гнойно-катаральный эндометрит регистрировали у 2 (16,7%) животных (табл. 2).
Отел коров второй опытной группы протекал без родовспоможения. Период выведения плода составил 30±10 минут. Гнойно-катаральный эндометрит диагностировали у 1 (8,3%) коровы.
Таблица 2 — Профилактическая эффективность применения препаратов «Симбитер-2» и «Гипролам»
| Показатель | «Гипролам» | «Симбитер-2» | Контроль |
|---|---|---|---|
| Количество животных, гол. | 12 | 12 | 12 |
| Период выведения плода, мин. | 60+10 | 30+10 | 120+30 |
| Заболело послеродовым эндометритом, гол., % | 2 (16,7) | 1 (8,3) | 7 (58,3) |
| Профилактическая эффективность, % | 71,4 | 85,7 | - |
Коровам контрольной группы в 50% случаев оказывали родовспоможение. Период выведения плода составил 120±30 минут. Одна корова и полученный от неё теленок пали. У 7 коров (58,3%) был зарегистрирован острый гнойно-катаральный эндометрит (табл. 2).
При изучении микробиоценоза в родовых путях коров, обработанных «Гипроламом», после отела установлены положительная динамика в увеличении содержания лактобацилл (на 1,5%), бифидумбактерий (на 1,4%), сапрофитного стафилококка (на 4,2%) и повышение уровня эпидермального стафилококка на 19,9%, тенденция к снижению количества стрептококков группы С (на 1,6%) и отсутствие эшерихий. В 25,0% случаев от них изолировали Enterococcus faecalis и гемолитические стрептококки (табл.1).
У коров, которым интравагинально применяли «Симбитер-2», после отела содержание лактобацилл и бифидумбактерий оставалось на оптимальном физиологическом уровне. У них отмечали повышение количества эпидермального стафилококка на 17,4% и гемолитических стрептококков на 29,7%. Кроме того, у них уменьшилось содержание Enterococcus faecalis на 11,7% при увеличении частоты выделения на 8,3% и не изолировали эшерихии и бактерии рода Enterobacter spp. (табл.1).
У коров контрольной группы после отела в родовых путях установлено снижение содержания лактобацилл на 13,9%, бифидумбактерий на 15,9% и повышение количества потенциально патогенной микрофлоры: стрептококков группы С на 14,2%, Enterococcus faecalis на 15,7%, эшерихий на 20,7%. При этом частота выделения Enterococcus faecalis, гемолитических стрептококков и эшерихий увеличилась на 50,0 и 25,0% соответственно. Кроме того, от них изолировали золотистый стафилококк и бактерии рода Enterobacter spp. в 25,0% случаев (табл.1).
При сравнении микробного пейзажа родовых путей у коров после отела установлено, что у обработанных «Гипроламом» животных количество лактобацилл и бифидумбактерий было на 26,2 и 29,4% выше, чем в контроле. От них не выделяли золотистый стафилококк, эшерихии и Enterobacter spp., регистрировали более низкое содержание стрептококков группы С на 33,3%, Enterococcus faecalis на 39,6% и гемолитических стрептококков на 27,5%, частота изоляции которых была также меньше на 25,0 — 50,0%.
В родовых путях животных, которым применяли «Симбитер-2», по сравнению с контролем, было выше содержание лактобацилл на 25,6%, бифидумбактерий на 27,5%, ниже уровень стрептококков группы С на 32,1%, Enterococcus faecalis на 32,5%, гемолитических стрептококков на 19,8%, не обнаруживали золотистый стафилококк, эшерихии и бактерии рода Enterobacter spp. В отличие от животных, которым применяли «Гипролам», у них была ниже частота выделения гемолитических стрептококков и стрептококков группы С на 16,7%.
Результаты проведенных нами исследований показали, что интравагинальное применение глубокостельным коровам «Гипролама» и «Симбитера-2» способствовало поддержанию количества индигенной микрофлоры после родов на физиологическом уровне, препятствовало колонизации половых путей потенциально патогенной микрофлорой и профилактировало возникновение послеродовых инфекций в 71,4 и 85,7% случаев.
Таким образом, коррекция биоценоза влагалища глубокостельных коров пробиотиками «Гипролам» и «Симбитер-2» в значительной степени предупреждает развитие острого послеродового эндометрита. Высокая эффективность их применения обусловлена свойствами молочнокислых бактерий приживляться в родовых путях коров-матерей и поддерживать на оптимальном уровне содержание индигенной микрофлоры, обеспечивающей колонизационную резистентность генитального тракта, что предотвращает заселение его патогенными микроорганизмами и чрезмерное размножение условно патогенных бактерий, находящихся в родовых путях.
Литература.
1. Кузмич Р. Г. Послеродовые эндометриты у коров. Автореф. докт. дис. Витебск, 2000.
2. Турченко А. Н. Ветеринария, 2001, 7: 33–37.
3. Нежданов А.Г., Шахов А. Г. Послеродовые гнойно-воспалительные заболевания матки у коров. Ветеринарная патология, 2005, № 3: 61–64.
4. LeBlanc S. J., Duffield T. F, Leslie K. E., Bateman K. G., Keefe G. P., Walton J. S., Johnson W. H. Defining and Diagnosing Postpartum Clinical Endometritis and its Impact on Reproductive Performance in Dairy сows. American Dairy Science Association, 2002, 85:2223 — 2236.
5. Gilbert Robert O., Shin Sang T., Guard Charles L., Erb Hollis N., Marcel Frajblat. Prevalence of endometritis and its effects on reproductive performance of dairy cows. Theriogenology, 2005, 64(9): 1879 — 1888.
6. Azawi O.I., S. N. Omran, JJ. Hadad. A study on postpartum metritis in Iraqi buffalo cows: bacterial causes and treatment. Reprod Domest Anim. 2008, 43(5): 556–65.
7. Gautam G., Nakao T., Yusuf M., Koike K. Prevalence of endometritis during the postpartum period and its impact on subsequent reproductive performance in two Japanese dairy herds. Anim Reprod Sci., 2009, 12–116(3–4):175–87
8. Dubuc J., Duffield TF., Leslie KE., . Walton JS, Leblanc S. J. Effects of postpartum uterine diseases on milk production and culling in dairy cows /J. Dairy Sci, 2011, 94(3):1339–46.
9. Ефанова Л.И., Давыдова В.В., Смирнова Е. В. Биоценоз влагалища глубокостельных коров разных типов этологической активности. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизведения животных». Воронеж, 2012: 190–195.
10. Husted J. R. Bacteriae and Fungal Organisms in the Vagina of Normal Cows and Cows with Vaginitis. USA, Texas. A&M University, 2003.
11. Donofrio G., Herath S., Sartori C., Cavirani S., Flammini C.F., Sheldon I. M. Bovine herpesvirus 4 is tropic for bovine endometrial cells and modulates endocrine function. Reproduction, 2007, 134(1):183–97.
12. Miller A.N., Williams E.J., Sibley K., Herath S., Lane E.A. et all. The effects of Arcanobacterium pyogenes on endometrial function in vitro, and on uterine and ovarian function in vivo. Theriogenology, 2007, 15;68(7):972–80.
13. Banks M., Ibata G., Murphy A.M, Frossard J.P., Crawshaw T.R. Twomey D. F. Bovine lymphotropicherpesvirus and non-responsive post-partum metritis in dairy herds in the UK. Vet J., 2008, 176(2):248–50.
14. Donofrio G., Ravanetti L., Cavirani S., Herath S., Capocefalo A., Sheldon I. M. Bacterial infection of endometrial stromal cells influences bovine herpesvirus 4 immediate early gene activation: a new insight into bacterial and viral interaction for uterine disease. Reproduction, 2008, 136(3):361–6.
15. Fábián K., Makrai L., Sachse K., Szeredi L., Egyed L. An investigation of the aetiological role of bovine herpesvirus 4 in bovine endometritis. Vet J., 2008, 177(2):289–92.
16. Liu MC., Wu C.M., Liu Y.C., Zhao J.C., Yang Y.L, Shen J.Z., Identification, susceptibility, and detection of integrongene cassettes of Arcanobacterium pyogenes in bovine endometritis. J Dairy Sci., 2009, 92(8):3659–66.
17. Petit T., Spergser J., Rosengarten R., Aurich J. Prevalence of potentially pathogenic bacteria as genital pathogens in dairy cattle. Reprod Domest Anim, 2009, 44(1):88–91.
18. Bicalho R. C., Machado v. S., Bicalho M. L., Gilbert R.O., Teixeira A.G., Caixeta L.S., Pereira R.v. Molecular and epidemiological characterization of bovine intrauterine Escherichia coli. J Dairy Sci, 2010, 93(12):5818–30.
19. Dubuc J., Duffield T.F,. Leslie K.E,. Walton J.S,. LeBlanc SJ Risk factors for postpartum uterine diseases in dairy cows. J Dairy Sci., 2010, 93(12):5764–71.
20. Runciman D.J., Anderson G.A., Malmo J., Davis G. M. Prevalence of potential lypathogenic bacteria as genital pathogens in dairy cattle. Reprod. Domest Anim, 2010, 44(1):88–91.
21. Sheldon I.M., Rycroft A.N., Dogan B.et all Specific strains of Escherichia coli are pathogenic for the endometrium of cattle and cause pelvic inflammatory disease in cattle and mice. PLoS One, 2010, 5(2).
22. Дмитриева Т. О. Профилактика акушерской патологии высокопродуктивных коров в сухостойный период. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизведения животных». Воронеж, 2012: 171–177.
23. Лысенко С.И., Сафонов В. А. Влияние селенсодержащих препаратов на воспроизводительную функцию коров. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 333–336.
24. Джакупов И. Т. Применение препарата «Селекор» для профилактики родовых и послеродовых осложнений у коров-первотелок. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 315–317.
25. Cerri RL. Rutigliano H.M., Lima F.S., Araújo D.B., Santos J. E. Effect of source of supplemental selenium on uterine health and embryo quality in high-producing dairy cows. Theriogenology, 2009, 71(7):1127–37.
26. Brozos C.N., Kiossis E., Georgiadis M. P., Piperelis S., Boscos C. The effect of chloride ammonium, vitamin E and Se supplementation throughout the dry period on the prevention of retained fetal membranes, reproductive performance and milk yield of dairy cows. Livestock Science, 2009, 124 (1–3): 210- 215.
27. Баймищев М.Х., Пристяжнюк О. Н. Профилактика послеродовых осложнений у коров адаптогенами. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизведения животных». Воронеж, 2012: 77–83.
28. Нежданов А.Г., Лободин К.А., Денисенко М.Г., Полковников Р.М., Туренкова Л. Т. Препарат «Плацента активное начало» и эффективность его применения для профилактики и терапии послеродовых заболеваний у коров. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Новые фармакологические средства для животноводства и ветеринарии». Краснодар, 2001, т. 1: 91–92.
29. Турченко А.Н., Шевченко А. Н. Эффективность применения препарата пометин при акушерско-гинекологической патологии у коров. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 206–211.
30. Кушнир И.Ю., Лободин К. А. Влияние препарата плацента активное начало на состояние гомеостаза у коров после родов. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 108–113.
31. Сидоркин В. А. Егунова А.В., Гавриш В.Г., Нежданов А.Г., Лободин К. А. Опыт применения препарата «Уретон» в акушерско-гинекологической практике. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 299–305.
32. Arlt S., Padberg W., Drillich M., Heuwieser W. Efficacyofhomeopathic remedies as prophylaxis of bovine endometritis. J Dairy Sci, 2009, 92(10).
33. Barrett A.J., Murray R.D., Christley R.M., Dobson H., Smith R. F. Effects of the administration of oxytocin or carbetocin to dairy cows at parturition on their subsequent fertility. Vet Rec, 2009, 165 (21).
34. Zidane K., Niar A., Tainturier D. Comparative effect on clinical use of PGF2 α and REPROCINE in the treatment of retained placenta in dairy cows at Tiaret region (Algeria). Asian Journal of animals and Veterinary Advances, 2011, 6(6): 593–598.
35. Ивашкевич О.П., Ботяновский А.Г., Лиленко А.В., Лемешевский П.В., Курочкин Д. В. Профилактика и лечение эндометритов у коров и свиноматок препаратами на основе диоксида. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизведения животных». Воронеж, 2012: 205–215.
36. Михалев В.И., Мисайлов В.Д., Притыкин Н. В. Энрофур для профи-лактики послеродового эндометрита у коров. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 415–418.
37. Goshen T., Shpigel N. Y. Evaluation of intrauterine antibiotic treatment of clinical metritis and retained fetal membranes in dairy cows. Theriogenology, 2006, 66(9):2210–8.
38. Runciman D.J., Anderson G.A., Malmo J., Davis G. M. Effect of intrauterine treatment with cephapirin on the reproductive performance of seasonally calving dairy cows at risk of endometritis following periparturient disease. Aust. Vet J., 2008, 86(7).
39. Galvão KN., Greco LF., Vilela J.M., SáFilho M.F., Santos J. E. Effect of intrauterine infusion of ceftiofur on uterine health and fertility in dairy cows. J. DairySci, 2009. 92(4).
40. Richards B.D., Black D.H., Christley R.M., Royal M.D., Smith RF., Dobson H. Effects of the administration of ketoprofen at parturition on the milk yield and fertility of Holstein-Friesian cattle. Vet Rec., 2009,165(4):102–6.
41. Kaufmann T. B., Westermann S., Drillich M., Plöntzke J., Heuwieser W. Systemic antibiotic treatment of clinical endometritis in dairy cows with ceftiofur or two doses of cloprostenol in a 14-d interval. Animal Reproduction Science, 2010, 121: 55 — 62.
42. Нежданов А.Г., Мисайлов В.Д., Шахов А. Г. Болезни органов размножения у коров и проблемы их диагностики, терапии и профилактики. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы болезней органов размножения и молочной железы у животных». Воронеж, 2005: 8–11.
43. Zi-jian J. I., ZHAO Hong-qiong, Su-zhen M. A., BAI Li. Progress on Therapeutical Research of Endometritis in Cows. Progress in Veterinary Medicine, 2007, 4.
44. Machado v. S., Bicalho M. L. S., Pereira R. v. , Caixeta L. S., Bittar J. H. J., Oikonomou G., Gilbert R. O., Bicalho R. C. The effect of intrauterine administration of mannose or bacteriophage on uterine health and fertility of dairy cows with special focus on Escherichia coli and Arcanobacterium pyogenes. J. Dairy Sci., 2012, 95: 3100 -3109.
45. Xia Changjun, He Minglei, Gong Daqing,Gao Jinghua, Xing Guizhen, Liao Jianwei, Ni Hongbo. Therapeutic Efficacy Experiments of Xuyanning in Treating Endometritis of Dairy Cows. Journal of Heilongjiang Bayi Agricultural University, 2012, 2.
46. Кира Е. Ф. Бактериальный вагиноз. СПб, 2001.
47. Колесаева Ж.Ю., Мартикайнен З.М., Савичева А. М. Тарасова М. А. Особенности восстановления влагалищного микробиоценоза у родильниц после естественных родов и оперативного родоразрешения. Журнал акушерства и женских болезней, 2009, 3: 25–31.
48. Доброхотова Ю.З., Затикян Н. Г. Современные представления о механизмах развития дисбиоза влагалища. Акушерство, гинекология, репродукция, 2008, 1:7–9
49. Garoussi M.T., Khosrave A.R., Havareshti P. Mycoflora of cervicovaginal fluids in dairy cows with or without reproductive disorders. Mycopathologia, 2007, 164(2):97–100.
50. Анкирская А. С. Бактериальный вагиноз. Акушерство и гинекология, 1995, 6: 13–16.
51. Венцковский Б.Н., Товстановская В.А., Гуцуляк Р.В., Янковский Д.С., Дымент Г. С. Применение пробиотиков в комплексной терапии и профилактике воспалительных заболеваний в акушерстве и гинекологии. Метод. реком. К., 2001.
52. Lincke A., Drillich M., Heuwieser W. Die subklinische Endometritis des Rindes und ihr Einfluss auf die Fruchtbarkeit -eine Übersicht neuerer Untersuchungen. Berl. Münch. Tierärztl. Wschr, 2007, 120 (5–6): 245–250.
53. LeBlans SJ. Postpartum uterine disease and dairy herd reproductive perfor-mance: a review. Vet. J., 2008, 176(1): 102–14.
54. Dolezel R., Vecera M., Palenik T., Cech S., Vyskocil M. Systematic clinical examination of early postpartum cows and treatment of puerperal metritis did not have any beneficial effect on subsequent reproductive performance. Veterinarni Medicina, 2008, 53(2): 59 — 69.
55. Santos T.M., Caixeta L. S., Machado v. S., Rauf A.K., Gilbert R.O., Bicalho R. C. Antimicrobial resistance and presence of virulence factor genes in Arcanobacterium pyogenes isolated from the uterus of postpartum dairy cows. Vet Microbiol., 2010 28;145(1–2):84–9.
56. Ивановский А.А., Закирова С. В. Применение пробиотиков при эндометритах у коров. Аграрная наука евро-северо-востока, 2005, 7: 128–131.
57. Турченко А.Н., Коба И.С., Новикова Е.Н., Решетка М.Б., Петенко А.И., Горпиченко Е. А. Применение широко используемых в животноводстве пробиотических препаратов для профилактики острых послеродовых эндометритов у коров (на молочных комплексах). Ветеринария Кубани, 2012, 3: 11–13.
58. Otero M. C., Morelli L., Nader-Macias M. E. Probiotic properties of vaginal lactic acid bacteria to prevent metritis in cattle. Letters in Applied Microbiology 2006, 43: 91–97.
59. Fátima M. Elena Nader-Macías, Claudia Otero M., Carolina Espeche M., Natalia Maldonado C. Advances in the design of probiotic products for the prevention of major diseases in dairy cattle. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, 2008, 35 (11): 1387–1395.
60. Ametaj B. N., Iqbal S., Selami F., Odhiambo J. F., Wang Y., Gänzle M.G., Dunn S.M., Zebeli Q. Intravaginal administration of lactic acid bacteria modulated the incidence of purulent vaginal discharges, plasma haptoglobin concentrations, and milk production in dairy cows. Research in Veterinary Science, 2014 96(2): 365–370
61. Инструкция по применению биологического препарата Гипролам для профилактики эндометрита у коров (2012).
62. Янковский Д. С. Микробная экология человека: современные возможно-сти ее поддержания и восстановления. К., 2005.
63. Сидоров М.А., Скородумов Д.И., Федотов В. Б. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. М., 1995.
64. Беляков В. Д. Иммунопрофилактика в иммунологии. М., 1961.