РАЗРАБОТКА И ПРОИЗВОДСТВО МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ЖИВОТНЫХ И РАСТЕНИЙ
  • ПРИМЕНЕНИЕ

Влияние иммуномодуляторов синтетического и бактериального происхождения на гемоморфологический и биохимический статус телят-гипотрофиков

The impact of immunomodulators of synthetic and bacterial origin on hemomorphological and biochemical status in calves with hypotrophy

Всероссийский научно-исследовательский
ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии, г.Воронеж

Воронежский государственный аграрный университет имени
императора Петра I

2014г.

Аннотация
(Abstract)

Проведенными исследованиями установлено, что применение телятам с антенатальной гипотрофией имуномодуляторов синтетического и бактериального происхождения позволяет ускорить их реабилитацию, проявляющуюся повышением стабильности клеточных элементов их организма, стимуляцией синтетических и обменных процессов и уменьшением общих токсических воздействий.

The studies made stated that application of immunomodulators of synthetic and bacterial origin to calves with antenatal hypotrophy allows to accelerate their rehabilitation, becoming evident as their organisms’ cellular element stability increase, synthetic and metabolic processes stimulation and total toxic impact decrease.

Ключевые слова: телята-гипотрофики, Иммунофан, Пролам, гемоморфологический и биохимический статус.

Key words: calves with hypotrophy, Imunofan, Prolam , hemomorphological and biochemical status.

 

Врождённая (антенатальная) гипотрофия регистрируется у 9-21% новорожденных. Возникает как компенсаторно-приспособительная реакция при недостаточном снабжении плода кислородом, питательными и биологически активными веществами или при нарушении их усвояемости [9]. При данной патологии наблюдаются отклонения в функционировании систем крови, дыхания и пищеварения, мышечного аппарата и терморегуляции, которые повышают чувствительность организма животных к неблагоприятным факторам окружающей среды и риск развития неонатальных болезней [1]. Поэтому для успешного выращивания телят с синдромом антенатальной гипотрофии необходимо проведение мер по корректировке иммунной системы и обмена веществ. При этом выбор фармакологических средств должен осуществляться с учётом особенностей фармакодинамики и фармакокинетики у них [10].

Цель исследований - изучить влияние различных иммунотерапевтических средств на гемоморфологический и биохимический статус телят-гипотрофиков

Материалы и методы

Исследования проведены в условиях молочно-товарной фермы «Высокое» Воронежской области Лискинского района на телятах, полученных от коров красно-пёстрого скота. Новорожденных телят через 6-8 часов после второй выпойки молозива переводили в индивидуальные домики, расположенные на открытой площадке, где они содержались до 60-суточного возраста. Температура окружающей среды в период проведения опыта была в пределах -2…-180С , а в отдельные дни снижалась до -20…-250С. Затем молодняк по 12 голов переводили в групповые клетки, расположенные в телятнике, температура воздуха в котором составляла +8…+150С. Суточных телят подвергали комплексному обследованию с использованием клинических и инструментальных методов, на основании которого выделяли животных с синдромом симметричной гипотрофии 2 (средней) степени тяжести [9].

В качестве иммунокорригирующих средств применяли Иммунофан, Пролам и их сочетание. Иммунофан - синтетический иммуномодулирующий препарат, обладающий иммунорегулирующим, детоксикационным и гепатопротективным действием. Пролам - пробиотик, в состав которого входят жизнеспособные штаммы молочнокислых бактерий и стрептококков.

Для опыта было подобрано 4 группы телят-аналогов (n=12). Животные первой (контрольной) группы обработкам не подвергались (интактные). Телятам второй группы внутримышечно вводили Иммунофан по 50мкг ДВ трехкратно с интервалом в 48 часов начиная с первого дня жизни, третьей - ежедневно per os, начиная с первой выпойки молозива в течение 7 дней применяли пробиотик Пролам в дозе 3,5×108КОЕ/см3 лактобацилл и молочнокислых стрептококков и 7×107КОЕ/см3 бифидумбактерий, четвертой - обрабатывали Проламом и Иммунофаном по схемам второй и третьей групп. Телята находились под постоянным клиническим наблюдением в течение 70 суток. У 6 телят из каждой группы в возрасте 1, 10 и 70 суток из яремной вены отбирали пробы крови для проведения оценки состояния мембран эритроцитов, морфологических и биохимических исследований.

Морфологический анализ крови проводили на гематологическом анализаторе АВС Micros 60, биохимические исследования - на анализаторе Hitachi-902, содержание витаминов и микроэлементов определяли на атомно-адсорбционном спектрофотометре - 6500, молекул средней массы (ССМ) в соответствии с методическими рекомендациями [8,3,2]. Статистический анализ результатов проводили с использованием программы Statistica v6.1, оценку достоверности - по критерию Стъюдента [11].

Результаты и обсуждение

Анализ крови показал, что у телят всех групп в начале опыта изучаемые параметры не имели достоверных различий. Биохимический профиль соответствовал таковому у телят с синдромом врождённой гипотрофии 2 степени тяжести [9].

На 10 день опыта у телят-гипотрофиков контрольной группы отмечено снижение количества эритроцитов на 22,2%, гемоглобина на 4,5% и гематокрита на 15,4%, а эритроцитарные индексы увеличились - средний объем эритроцитов (MCV) на 8,7% и содержание в них гемоглобина (MCH) на 22,7%. На заключительном этапе возросли количество эритроцитов на 24,5%, гемоглобина на 11,6% и гематокрит на 11,4%, но снизились MCV и MCH на 10,5%

У телят, которым применяли Иммунофан, на 10 день опыта регистрировали снижение количества эритроцитов на 11,3%, увеличение концентрации гемоглобина на 16,8%, MCV и MCH на 11,8 и 26,2%. На 70 день наблюдали увеличение количества эритроцитов на 12,7%, гемоглобина на 2,7% и гематокрита на 2,0%, а MCV и MCH снизились на 9,7 и 4,9%

У животных, получавших Пролам, на 10 день отмечали снижение количества эритроцитов на 11,3%, увеличение содержания гемоглобина на 23,8%, гематокрита на 1,2%, MCV и MCH на 14,1 и 40,0% соответственно. На 70 сутки наблюдали увеличение количества эритроцитов на 14,5%, гематокрита на 2,3%, снижение MCV на 10,7% и MCH на 12,6%.

У телят, которым применяли Пролам совместно с Иммунофаном, на 10 сутки регистрировали уменьшение количества эритроцитов и гематокрита на 17,7 и 10,7%. Концентрация гемоглобина, MCV и MCH увеличились на 4,3; 8,6 и 26,9% соответственно. На 70 сутки повысилось количество эритроцитов на 19,6%, гемоглобина на 7,3% и гематокрита на 9,4%, а MCV и MCH снизились на 8,5 и 10,6% соответственно.

Показатель гематокрита в течение опыта в различных группах варьировал в зависимости от изменения общего количества эритроцитов и их среднего объема, что указывает на изменчивость функции красного костного мозга. При этом оценивая изменение динамики показателей гемоглобина, MCV и MCH, можно утверждать, что адаптационный механизм, направленный на поддержание адекватной оксигенации тканей, более активно включался у животных опытных групп. Он проявлялся в активации синтеза гемоглобина и включении его в состав эритроцитов. В результате у всех животных опытных групп количество гемоглобина, показатели MCV и MCH на 10 сутки повышались. Наиболее интенсивно это наблюдалось у животных, получавших Пролам. К 70 суткам у всех телят происходило постепенное восстановление общего количества эритроцитов до исходных значений, а содержание гемоглобина в крови достоверно повышалось.

В крови контрольных животных на 10 сутки отмечали снижение содержания глюкозы на 46,5%, пировиноградной и молочной кислоты на 46,2 и 40,0% соответственно. На 70 сутки количество глюкозы в крови повышалось на 36,8%, а пировиноградной и молочной кислоты снижалось на 13,6 и 38,9%.

На 10 сутки у телят, получавших Иммунофан, Пролам и их сочетание, наблюдали снижение концентрации пировиноградной кислоты на 33,5; 33,3; 38,5% и молочной на 60,0; 64,5 и 50,0% соответственно, а содержание глюкозы уменьшилось в среднем на 31,4%. На 70 день у них регистрировали снижение содержания пировиноградной кислоты на 16,7; 11,7 и 16,3%, молочной кислоты на 25,0; 27,3 и 20,0% и увеличение концентрации глюкозы на 14,6; 16,7 и 8,3% соответственно.

Значительное уменьшение концентрации глюкозы на 10 сутки у животных всех групп связано с её расходом на обеспечение формирующихся адаптационных процессов, происходящих в их организме. Постепенное снижение на 10 сутки пировиноградной и молочной кислоты свидетельствует об активации аэробного пути гликолиза. У телят, которые получали препараты, наблюдали более высокую активность аэробного гликолиза. Так, соотношение лактат/пируват в второй группе было на 44,8% (10,0±0,37), третьей на 58,6% (7,5±0,42) и четвертой - на 27,1% (13,2±0,31) ниже, чем в контроле (18,1±0,46).

На 10 и 70 сутки у всех животных отмечали увеличение количества общего белка. У телят опытных групп в указанные сроки этот показатель по сравнению с контролем был выше: при назначении Иммунофана на 6,8 и 14,4%, Пролама на 9,4 и 16,1% и Пролама в сочетании с Иммунофаном на 6,2 и 6,6% соответственно.

Увеличение количества общего белка в сыворотке крови у телят, которым применяли Иммунофан, связано с повышением активности синтетических процессов в печени, а у получавших Пролам с активацией процессов расщепления и всасывания питательных веществ в желудочно-кишечном тракте.

Концентрация мочевины в крови контрольных телят на 10 и 70 сутки уменьшилась на 4,0 и 4,2%. У животных, которым применяли Иммунофан, Пролам и их сочетание данный показатель в указанные сроки снизился на 13,5 и 13,3%, 8,0 и 15,2%, 26,0 и 5,4% соответственно. Более выраженная динамика изменения мочевины у получавших Иммунофан телят, вероятно, связана с активацией белоксинтезирующей функции печени, а Пролама - с уменьшением образования аммиака в кишечнике.

Концентрация молекул «средней» массы у контрольных животных к 10 дню не изменилась, а на заключительном этапе была на 6,7% выше нормы (≤0,30 усл.ед.), что указывает на сохранение у них аутоинтоксикации обменного происхождения. У телят аналогичного возраста, получавших Пролам и Иммунофан, регистрировали нормальный уровень ССМ, свидетельствующий об отсутствии у них эндогенной интоксикации. Сочетание указанных препаратов так же привело к снижению концентрации молекул средней массы, однако на 10 и 70 сутки их уровень превышал норму на 16,7 и 6,7% соответственно.

В патогенезе аутоинтоксикации важная роль принадлежит нарушениям мембранных структур организма, косвенным отражением состояния которых можно считать показатели внеэритроцитарного гемоглобина (ВЭГ). У животных контрольной группы на 10 сутки отмечено снижение ВЭГ на 37,5%, а к 70 дню увеличение на 20,0%, свидетельствующие о нарушении мембран эритроцитов и наиболее вероятном его токсическом происхождении. У телят, которым применяли Иммунофан и Пролам, на 10 сутки отмечали его снижение на 75,0% и на 70 день на 25,0%. У животных, получавших Пролам в сочетании с Иммунофаном, в указанные сроки концентрация ВЭГ снизилась на 50,0%. Уменьшение этого показателя свидетельствует о нормализации мембран эритроцитов и снижении эндогенной интоксикации.

Значительные изменения наблюдали в липидном обмене. В крови всех животных на 10 день регистрировали увеличение количества общих липидов: в контроле - на 73,3% и у телят, получавших препараты - в среднем на 68,8%. К 70 дню у телят, которым применяли Иммунофан и Пролам, их содержание повышалось на 63,0 и 44,4%, а в контроле и у телят, получавших Иммунофан в сочетании с Проламом, отмечали незначительное снижение на 3,8 и 3,7% соответственно. На 10 и 70 сутки наблюдали увеличение содержания холестерина: в контроле в 3,4 раза и на 3,2%, при назначении Иммунофана в 2,7 раза и на 7,4%, Пролама в 2,7 раза и на 11,1%, Пролама в сочетании с Иммунофаном в 3,3 раза и на 3,2% соответственно. Содержание триглицеридов у всех телят на 10 сутки увеличилось, а на 70 - снизилось: в контроле соответственно в 1,5 раза и на 33,3%, при назначении как Пролама, так и Иммунофана в 2,5 раза и на 20,0% и при совместном их применении - в 2 раза и на 25,0%.

Повышенное содержание общего холестерина свидетельствует об усиленном биосинтезе желчных кислот, кортикостероидов и других образующихся из него биологически активных веществ. Увеличение образования желчных кислот в данном случае направлено на поддержание функциональной активности желудочно-кишечного тракта, а кортикостероидов - на обеспечение долговременной адаптации. Повышение содержания триглицеридов, по-видимому, связано с необходимостью их использования в качестве энергетического субстрата для обеспечения адаптационных реакций организма. Такой характер изменений липидного обмена играет важную компенсаторную роль, отсюда целесообразность гиперлипидемии и ее участие в саморегуляции адаптационно-компенсаторных процессов при гипотрофии. Приведенные данные показывают, что интенсификация липидного обмена для получения энергии у животных контрольной группы запаздывает.

Снижение активности ЩФ сыворотки крови телят на 10 и 70 дни в контроле на 14,1 и 27,9%, при назначении Иммунофана на 29,8 и 8,9%, Пролама на 34,8 и 7,1% и Пролама в сочетании с Иммунофаном на 15,6 и 32,4% соответственно связано с увеличением функциональной нагрузки на печень, а также на активацию минерализации костей

Высокая концентрация γ-ГГТ в крови телят в первые сутки после рождения свидетельствует о низкой функциональной активности печени и недостаточном участии в процессе экскреции этого фермента в составе желчи в кишечник. На 10 и 70 сутки отмечали снижение его концентрации у контрольных телят на 93,1 и 79,7%, при назначении Иммунофана на 95,4 и 81,4%, Пролама на 96,6 и 78,3% и Пролама в сочетании с Иммунофаном на 95,6 и 70,8% соответственно. Снижение активности ЩФ и концентрации γ-ГГТ в крови телят в указанные сроки связано с активацией желчеобразовательной и желчевыделительной функций печени и становлением пищеварительных процессов.

Активность фермента АлАт в крови всех животных изменялась: в контроле на 10 день отмечали ее снижение на 10,7%, на 70-й - повышение на 22,0%, при назначении Иммунофана снижение на 10 и 70-е дни на 9,1 и 10,9%, Пролама на 8,3 и 13,6%, Иммунофана в сочетании с Проламом на 10 сутки снижение на 9,2% и в дальнейшем она не изменилась.

У всех телят активность фермента АсАт в крови повышалась на 10 сутки и снижалась к 70 дню, оставаясь выше нормы: в контроле соответственно на 47,0 и 33,3%, при назначении Иммунофана на 13,5 и 25,6%, Пролама на 15,4 и 26,7% и Пролама в сочетании с Иммунофаном на 27,9 и 45,3%, что связано с усилением обменных процессов в мышцах.

У всех новорожденных телят регистрировали высокую концентрацию СБЙ в крови, что является закономерным явлением. В последующем его уровень у животных всех групп снижался до физиологически нормальных значений.

Одним из показателей, отражающих состояние антиоксидантной системы крови, является концентрация витамина Е. На 10 и 70 дни в контроле наблюдали снижение его уровня на 14,0 и 16,3% соответственно. Такая тенденция возможна при активации декомпенсационной деятельности системы антиоксидантной защиты организма, связанной с усилением липидного обмена и образованием перекисных и других токсичных соединений. При применении Иммунофана и Пролама к 10 дню наблюдали увеличение концентрации витамина Е на 63,3 и 65,3% и к 70 дню на 18,8 и 21,0% соответственно. У телят, которым применяли Пролам в сочетании с Иммунофаном, на 10 сутки содержание витамина Е увеличилось на 50,0%, а к концу опыта снизилось на 20,0%. Повышение концентрации витамина Е в сыворотке крови животных опытных групп свидетельствует о меньшем расходовании токоферола на детоксикационные процессы в организме.

Важную роль для роста и развития молодых животных играют витамин А и каротин. У телят всех групп на 10 день в крови отмечали увеличение их концентрации, а к 70 суткам - снижение. Такая тенденция связана с тем, что витамины и микроэлементы в значительной концентрации поступали в организм животных из молозива (молока) коров-матерей, но их резорбция у телят каждой группы была различной. В контроле на 10 день увеличение концентрации витамина А и каротина составило 20,0%, снижение на 70 день - 16,7 и 33,3%, при назначении Иммунофана соответственно - 80 и 40,0%, 22,2 и 14,3%, Пролама 2,4 раза и 80,0%, 33,3 и 33,4%, Пролама в сочетании с Иммунофаном 60,0 и 12,5; 20,0% и без изменений.

Показатели минерального обмена также отличались у телят контрольной и опытных групп. Концентрация кальция в крови всех животных на 10 день снизилась: в контроле на 20,8%, при назначении Иммунофана на 50,0%, Пролама на 45,8%, Пролама в сочетании с Иммунофаном на 50,0%, а на 70 день увеличилась соответственно на 26,3%; в 2 раза; на 84,6% и в 2 раза. Содержание фосфора на 10 день повысилось в крови всех животных: в контроле на 12,0%, при назначении Иммунофана на 41,7%, Пролама на 50,0%, Пролама в сочетании с Иммунофаном на 28,0%, к 70 дню оно было без изменений в контроле и снизилось у телят опытных групп соответственно на 14,7; 16,7 и 6,3%. Полученные данные свидетельствуют о более медленном становлении кальций-фосфорного обмена у телят контрольной группы.

На 10 день в контроле отмечено увеличение содержания меди, цинка, железа, магния и марганца на 14,3; 38,2; 10,0; 20,0 и 23,8% соответственно, а к 70 дню его снижение на 6,6; 13,7; 9,1 и 33,3%, а концентрация марганца оставалась на прежнем уровне.

У животных, получавших Иммунофан, на 10 день наблюдали увеличение количества меди, цинка, марганца, железа и магния на 32,5; 60,0; 61,9; 31,0 и 30,0% и его снижение к 70 суткам на 18,1; 20,8; 23,5; 5,3 и 23,1%, при назначении Пролама соответственно на 45,8; 63,7; 85,7; 56,7 и 40,0% и на 25,6; 22,6; 25,0; 21,3 и 35,7%, Пролама в сочетании с Иммунофаном на 21,8; 36,5; 42,9; 40,0 и 20,0% и на 13,8; 10,0; 13,3; 11,9 и 25,0%

Таким образом, у животных, которым применяли препараты, по сравнению с контролем, резорбция витаминов, микро- и макроэлементов из молозива (молока) коров-матерей происходила более активно, но к концу опыта положительная динамика у них не отмечена, о чем свидетельствуют практически одинаковые показатели витаминного и минерального обменов у всех подопытных телят.

Заключение

Применение Иммунофана телятам-гипотрофикам оказало положительный эффект на состояние мембранных структур их организма, морфологический и биохимический профиль крови, что проявилось в снижении уровня аутоинтоксикации, оптимизации обмена веществ, процессов гемопоэза и функции печени.

Пробиотик Пролам так же оказывает положительное влияние на гемоморфологический статус и обменные процессы телят с синдромом гипотрофии. Бактерии, входящие в его состав, размножаясь в кишечнике животных, синтезируют ферменты и биологически активные вещества, которые активируют процессы пищеварения и нормализуют обменные процессы в организме животных [4,5,6,7].

При сочетанном применении Пролама и Иммунофана регистрируется положительное действие каждого из них при отсутствии синергизма.

Таким образом, применение иммуномодулятора Иммунофан и пробиотика Пролам позволяет ускорить реабилитацию телят-гипотрофиков путем повышения стабильности клеточных элементов их организма, стимуляции синтетических и обменных процессов и уменьшения общих токсических воздействий.

Разрабатывая курс реабилитации телят с синдромом антенатальной гипотрофии, следует учитывать морфофункциональные особенности их организма и при снижении эффекта применяемых средств необходимо повторить реабилитационный курс.

Литература

1. Анохин Б.М. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных / Б.М.Анохин и др. Под ред. В.М. Данилевского. - М.: Агропромиздат, 1991. - 575 с.

2. Алехин Ю.Н. Эндогенные интоксикации у животных и их диагностика. Методические рекомендации - Воронеж, 2000.- 12 с.

3. Алехин Ю.Н. Методы диагностики перинатальной патологии у крупного рогатого скота. Методическое пособие. - Воронеж, 2013. - 25 с.

4. Бондаренко В.М. Пробиотики, пребиотики, симбиотики в терапии и профилактике кишечных дисбактериозов / В.М.Бондаренко, Н.М.Грачева // Фраматика.- 2003.- №7.- С. 56-57.

5. Деблик А.Г. Влияние пробиотиков на морфологию органов животных / А.Г. Деблик, А.Р. Маликова, Д.А. Ижбулатова // Российский ветеринарный журнал.- 2007.- №2.- С.14- 16.

6. Зинченко Е.В. Иммунобиотики в ветеринарной практике: о механизме действия пробиотиков и иммунопробиотических препаратов при использовании в ветеринарии / Е.В.Зинченко, А.П.Пронин. Пушкино.- М., 2000.- 163 с.

7. Пышманцева Н.А.Результаты внедрения пробиотиков «Пролам» и «Бацелл-М» в условиях «Краснодарская птицефабрика» / Н.А. Пышманцева // Эффективное животноводство.- 2010.- №7.- С.50-51.

8. Рецкий М.И., Шахов А.Г., Шушлебин В.И. и др. Методические рекомендации по диагностике, терапии и профилактике нарушений обмена веществ у продуктивных животных. - Воронеж, 2005. 94 с.

9. Шахов А.Г., Алехин Ю.Н., Сашнина Л.Ю. и др. Методическое пособие по диагностике и профилактике нарушений антенатального и интранатального происхождения у телят - Воронеж: изд-во «Исток», 2013. - 93 с.

10. Шахов А.Г., Шабунин С.В., Рецкий М.И. и др. Методические рекомендации по оптимизации формирования колострального иммунитета у новорожденных животных - Воронеж., 2009. - 41 с.

11. Юнкеров, В.И., Григорьев С.Г. Математико-статистическая обработка данных медицинских исследований. - СПб.: ВМедА, 2002. 266 с

References

1. Anokhin B.M. Internal non-contagious diseases of farming animals /B.M.Anokhin et al./edited by V.M.Danilevskiy. - M.: Agropromizdat, 1991.- 575 p.

2. Alekhin Yu.N. Endogenous intoxication in animals and its diagnostics. Guidelines - Voronezh, 2000. - 12 p

3. Alekhin Yu.N. Diagnostic techniques of perinatal pathology in cattle. Methodological textbook. - Voronezh, 2013. - 25 p.

4. Bondarenko V.M. Probiotics, prebiotics, synbiotics in therapy and prophylaxis of intestinal dysbacteriosis / V.M.Bondarenko, N.M.Gracheva // Framatika. - 2003.- № 7.- P. 56-57.

5. Deblik A.G. The impact of probiotics on the organ morphology of animals / A.G.Deblik, A.R.Malikova, D.A.Izhbulatova // Russian veterinary journal. - 2007. - № 2. - P. 14-16.

6. Zinchenko Ye.V.Immunobiotics in veterinary practice. About the mechanism of action of probiotics and immunoprobiotic drugs application in veterinary medicine /Ye.V.Zinchenko, A.P.Pronin, Pushkino. - M., 2000. - 163 p.

7. Pyshmantseva N.A. The results of «Prolam» and «Bacell» probiotics introduction in Krasnodarsk poultry factory” environment / N.A.Pyshmantseva // Effective animal husbandry. - 2010. - № 7. - P. 50-51.

8. Retskiy M.I., Shakhov A.G., Shushlebin V.I. et al. Guidelines on diagnostics, therapy and prophylaxis of metabolic disorders in productive animals. - Voronezh, 2005, 94 p.

9. Shakhov A.G., Alekhin Yu.N., Sashnina L.Yu. et al. Methodological textbook about diagnostics and prophylaxis of antenatal and intranatal origin in calves / - Voronezh: publishing house “Istok”, 2013. - 93 p.

 

 

А.Г.Шахов
доктор ветеринарных наук, профессор, член-корреспондент, заведующий отделом микробиологии,
вирусологии и иммунологии, Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт
патологии, фармакологии и терапии, Воронеж, Российская Федерация
E-mail: A.G. Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Ю.Н.Алехин
доктор ветеринарных наук, заведующий лабораторией клинико-функциональной диагностики,
Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и
терапии, Воронеж, Российская Федерация
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Л.Ю.Сашнина
кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник
отдела микробиологии, вирусологии и иммунологии, Всероссийский научно-исследовательский
ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии, Воронеж, Российская Федерация
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Т.А.Ерина
аспирант отдела микробиологии, вирусологии и иммунологии, Всероссийский научно-
исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии Воронеж,
Российская Федерация
E-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

О.В.Пригородова
младший научный сотрудник лаборатории клинико-функциональной диагностики, Всероссийский
научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии Воронеж,
Российская Федерация
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

А.В.Голубцов
кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры акушерства и физиологии
сельскохозяйственных животных, Воронежский государственный аграрный университет имени
императора Петра I
E-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

 

A.G.Shakhov
Doctor of Veterinary Sciences, Professor, Corresponding Member of the RAAS, Head of Microbiology,
Virology and Immunology Department, State Scientific Institution All-Russian Veterinary Research
Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy, Voronezh, Russian Federation
E-mail: A.G. Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Yu.N.Alekhin
Doctor of Veterinary Sciences, Head of Clinico-Functional Diagnostics Laboratory, State Scientific
Institution All-Russian Veterinary Research Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy, Voronezh,
Russian Federation
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

L.Yu.Sashnina
Candidate of Veterinary Sciences, Key Scientific Associate of Microbiology, Virology and
Immunology Department, State Scientific Institution All-Russian Veterinary Research Institute of
Pathology, Pharmacology and Therapy, Voronezh, Russian Federation
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

T.A.Yerina
Postgraduate student of Microbiology, Virology and Immunology Department, State Scientific
Institution All-Russian Veterinary Research Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy, Voronezh,
Russian Federation
E-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

O.V.Prigorodova
Junior researcher of Clinico-Functional Diagnostics Laboratory, State Scientific Institution All-
Russian Veterinary Research Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy, Voronezh,
Russian Federation
E-mail:Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

A.V.Golubtsov
Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, Chair of Obstetrics and Physiology of
Farming Animals, Voronezh State Agricultural University named after Emperor Peter the Great
E-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

 

Скачать статью

Наверх